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体外细胞水平 CRISPR/Cas9 基因编辑服务

从靶点设计到测序验证,在培养细胞中完成单基因敲除、多基因敲除与基因表达调控(CRISPRa / CRISPRi)。质粒、慢病毒、腺病毒三种递送方式可选,按细胞特性与实验目的选择最合适的一种。

服务概述
IN VITRO CRISPR/Cas9 GENE EDITING

Cas9 负责切,sgRNA 负责带路。sgRNA 与靶序列配对之后,Cas9 在那个位点把 DNA 双链切开,细胞用 NHEJ 缝合时经常多出或少掉几个碱基,编码区一旦移码,基因就失活了。

敲除这一步,各家做法都一样。真正决定成败的是怎么把这套系统送进细胞。

三条路。质粒靠转染,慢病毒和腺病毒靠感染。

方案一
质粒
细胞好转染、只做短期验证。省掉病毒包装和滴度测定,周期最短。
方案二
慢病毒
细胞转不进去、要建稳转株、要做文库。感染绕开转染这一步。
方案三
腺病毒
不想让外源序列整合进基因组,又要高效感染原代细胞。
技术原理速览
HOW CRISPR/Cas9 WORKS

已经熟的就跳过,直接看 03 怎么选递送工具。这里只讲一次敲除到底发生了什么。

1 定位
sgRNA 与靶序列配对,把 Cas9 带到指定位点
2 切割
Cas9 在 PAM 上游切开,形成双链断裂
3 修复
细胞启动 NHEJ,断端常有少量碱基插入或缺失
4 敲除
编码区移码,基因功能丧失,这就是 KO
还有一条修复通路。断端旁边如果有同源模板,细胞会走 HDR 按模板修复。HDR 只在特定分裂期活跃,效率明显低于 NHEJ,所以依赖模板的精准改写比敲除难得多。四种递送工具的完整对比见 CRISPR/Cas9 基因编辑服务
细胞水平基因编辑能做什么
WHAT WE CAN DO
基因敲除(KO)

靶位点切开后产生插入或缺失,编码区移码导致功能丧失。最成熟的一类,也是做得多的一类。

多基因敲除

分别设计各基因的 gRNA 同时转染,或者先建一株 Cas9 稳转细胞再逐个转入 gRNA。基因数量越多越难,筛选策略要在方案阶段定下来。

表达调控(CRISPRa / CRISPRi)

dCas9 融合激活或抑制元件,DNA 序列不动,只调转录水平。研究必需基因、需要可逆调控时用。

非编码基因敲除

lncRNA、miRNA、circRNA 的策略和编码基因不一样,要看转录本结构和剪接位点,单独评估。

不想自己操作、只想拿到结果,直接看 单克隆基因敲除细胞株

三种递送工具怎么选
PLASMID vs LENTIVIRUS vs ADENOVIRUS

选之前先回答三个问题。

1. 你的细胞好不好转?

常规细胞系(HEK293T、HeLa 这类)转染效率够用,质粒就行。原代细胞、悬浮细胞、神经元、免疫细胞基本转不进去,得靠病毒感染。

2. 要不要整合进基因组?

要长期稳定表达,走慢病毒。后续要测序、希望基因组保持干净,走腺病毒或质粒。

3. 需要表达多久?

短期一次性实验用质粒,瞬时表达,几天后就衰减。要持续表达用慢病毒。要短期高强度表达用腺病毒。

对比项质粒慢病毒腺病毒
是否整合基因组不整合整合不整合
进入细胞方式转染感染感染
适用细胞转染效率高的细胞系难转染细胞、原代细胞、悬浮细胞原代细胞、难转染细胞
表达时长瞬时(数天)长期稳定较强但随时间衰减
载体容量较大
量化口径质粒量(μg)滴度(TU/mL)滴度(PFU/mL)单位待确认
生物安全等级BSL 等级需实验部确认后填写,不得按行业通例发布
主要局限难转染细胞效率低整合带来插入风险高 MOI 可能有细胞毒性
典型场景快速验证、自己包装病毒的上游稳转株、文库筛选不希望改变基因组的实验

滴度范围、纯度标准这些具体数值按实际 SOP 交付,见 08 交付标准

① 细胞好不好转染?
好转染(HEK293T、HeLa 等)→ 质粒,瞬时表达、不整合、成本最低
难转染(原代、悬浮、神经元)→ 问下面这一条
② 要整合进基因组吗?
要长期稳定表达、建稳转株、做文库 → 慢病毒
不希望外源序列整合、要高效感染原代细胞 → 腺病毒
质粒递送 CRISPR/Cas9
PLASMID DELIVERY
什么时候选

细胞转染效率高、只做短期表达、或者后续要自己包装病毒。质粒省掉了病毒包装和滴度测定两步,周期最短,也不涉及病毒操作的备案要求。

能构建哪些载体
  • sgRNA 表达载体,U6 等 Pol III 启动子驱动。每个靶基因建议设计 3 到 4 条并联筛选,单条效率低是返工最常见的原因。
  • Cas9 表达质粒,SpCas9 常规形式,或带筛选标记、荧光标签的融合形式,比如 pSpCas9(BB)-2A-EGFP/PURO,同时带 EGFP 和嘌呤霉素抗性,转染后可以直接药筛或流式富集。
  • All-in-one 质粒,sgRNA 和 Cas9 在同一个载体上,一次转染完成导入。
  • Cas9n 双切口与 dCas9 系统,前者降脱靶,后者做表达调控。
载体骨架、启动子、筛选标记的实际可选项清单需实验部确认后回填,占位描述不能直接发。
元件怎么挑
  • 启动子,sgRNA 常用 U6 这类 Pol III,Cas9 常用 CBh、EFS、EF1a 这类 Pol II。不是越强越好,强度影响表达量,也影响脱靶概率。
  • 标记,抗性基因(Puro / Bsd / Neo)用来药筛富集,荧光蛋白(EGFP / mCherry)用来看转染效率和分选。转染效率低的细胞,带标记能省很多事。
  • 单载体还是双载体,All-in-one 简单,适合高效转染的细胞;分装方案在后续病毒包装上更灵活。

质粒靠转染,难转染的细胞基本没戏,表达也是瞬时衰减。这两类需求看 慢病毒腺病毒

慢病毒递送 CRISPR/Cas9
LENTIVIRAL DELIVERY
什么时候选

细胞转不进去、要长期稳定表达、要建稳转株、要做 sgRNA 文库筛选。这几种情况基本只能选它。

能覆盖哪些细胞

慢病毒靠感染进入细胞,绕开了转染这一步,可编辑的细胞范围一下就宽了,原代细胞、悬浮细胞、神经元、免疫细胞都在里面。我们做敲除细胞株用的也是这套。

病毒形式
  • sgRNA 慢病毒,感染已经稳定表达 Cas9 的细胞系。片段小、滴度高,文库筛选和多靶点并行的常规选择。
  • Cas9 慢病毒,先建 Cas9 稳转株再转入 sgRNA,适合反复换靶点的课题组。
  • All-in-one 慢病毒,一次感染完成系统导入,操作最省事。
  • 可诱导、条件性表达系统,需要控制编辑发生时点时用,避免持续表达累积脱靶。
  • sgRNA 文库慢病毒,按项目规模包装,重点看滴度和文库覆盖度。
病毒形式清单和滴度范围需实验部确认后填写。
往下的事

载体自带抗性或荧光标记的话,感染后直接药筛富集,再用有限稀释法挑单克隆,就能拿到基因型一致的敲除细胞株,见 单克隆基因敲除细胞株。滴度定义、保存条件这些通用参数在 慢病毒包装服务

代价是整合。外源序列会插进宿主基因组,长期表达是好处,插入风险也得认。不想改基因组,看腺病毒。

腺病毒递送 CRISPR/Cas9
ADENOVIRAL DELIVERY
什么时候选

不想让外源序列整合进基因组,又要高效感染原代细胞,或者要在有限时间窗口里做高强度敲除。

非整合带来什么
  • 基因组保持干净,腺病毒以游离体形式待在细胞核里,不往基因组上插。后续要测序、不想引入插入突变的实验,这一点是决定性的。
  • 原代细胞也能打进去,感染效率普遍高于质粒转染,载体容量还比 AAV 大,装 SpCas9 全长没有压力。
  • 表达强但衰减快,编辑窗口集中在前一段,之后慢慢掉。要长期稳定表达请回头看慢病毒。
体外和在体不是一个标准

腺病毒既能感染体外细胞,也能通过尾静脉给药做动物在体编辑。但在体对病毒纯度和内毒素的要求比体外高得多,方案阶段就得说清用途。要长期、组织特异性的在体编辑,AAV-saCas9 更合适。免疫原性和通用技术参数见 腺病毒包装服务

服务流程
WORKFLOW

三种递送方式共用一套流程,差别只在第 4 步。

STEP 1
需求确认与方案设计
周期待确认
STEP 2
sgRNA 设计与评估
每靶点 3 到 4 条
STEP 3
载体构建与测序验证
周期待确认
STEP 4
递送至细胞(三选一)
质粒 / 慢病毒 / 腺病毒
STEP 5
编辑效果验证
T 载体测序为主
STEP 6
交付
质粒或病毒液加报告
第 4 步的三种走法
  • 质粒,制备转染级质粒,按方案转染。
  • 慢病毒,包装、测滴度、感染靶细胞后药筛富集。第一次合作的细胞系建议先做感染预实验定 MOI。
  • 腺病毒,包装纯化、测滴度、感染或按方案给药。在体还要先明确给药途径和目标组织。

第 2 步给出设计报告供确认,第 5 步用 T 载体测序看突变类型,序列变化能直接读到。

各步骤周期需业务和实验部确认后回填。周期数字必须真实,不能估。
交付标准与质控
DELIVERABLES & QC
交付项规格检测方式说明
重组质粒待回填琼脂糖凝胶 + 测序双重验证转染级 / 常规级可选
慢病毒液体积 / 滴度待回填滴度测定附滴度测定结果
腺病毒液体积 / 滴度待回填滴度测定 + 纯度检测在体用途需额外纯化
测序报告覆盖 sgRNA 插入区与关键元件Sanger 测序确认序列完全正确
载体图谱文件.gb / .dna 各 1 份可直接导入常用分子生物学软件
无菌检测阴性常规质控常规项
支原体检测阴性常规质控常规项
内毒素检测限值待回填LAL 法腺病毒用于动物在体时必检
编辑效率验证(可选)T 载体测序递送靶细胞后的检测结果

腺病毒做动物在体,纯化和内毒素控制的要求比体外高一档,需求阶段说清用途,按对应标准生产。

标着待回填的规格,要由实验部按实际 SOP 填完才能发。这张表是客户判断专业度的第一手依据。
服务价格与报价构成
PRICING

同样是「基因敲除」四个字,用质粒还是病毒、做混合克隆还是单克隆、要不要加脱靶分析,工作量能差好几倍。所以没有统一标价,确认需求后给书面报价。

影响报价的几个变量
  1. 递送方式,质粒构建、慢病毒包装、腺病毒包装、AAV 包装、单克隆细胞株,复杂度依次上升。
  2. 靶基因和 sgRNA 数量,单靶点、双靶点、双切口 nickase、多基因、文库,各不一样。
  3. 细胞难度,常规贴壁细胞系、悬浮细胞、原代细胞、干细胞、难转染细胞,成本差距明显。
  4. 附加验证,WB、qPCR、T 载体测序、STR 鉴定、脱靶分析、功能学检测。
  5. 交付规模和周期,质粒量、病毒滴度与体积、克隆数量,加急与否。

把靶基因、物种、细胞系、预期用途四项发过来,就能拿到含方案、周期和费用的书面报价。

为什么选择汉恒
WHY HANBIO
细胞来源可追溯
细胞全部购自中国科学院细胞库,代数低、无污染,可提供 STR 鉴定报告。
四种递送方式都在
质粒、慢病毒、腺病毒、AAV-saCas9 都能做,按你的细胞和目的推荐,而不是只有一种方案。
测序结果看得见
单克隆经 T 载体测序验证突变类型,DNA 序列的具体变化直接可读,另可做酶切与 WB 鉴定。
文献可查
客户成果见于 Nature Neuroscience、Nature Communications、Autophagy、Molecular Therapy、Cell Death & Disease 等期刊。
典型应用场景
APPLICATIONS
基因功能研究
敲掉候选基因看表型,验证基因与通路的因果关系。
药物靶点验证
敲除后评估增殖、凋亡与药物敏感性。
信号通路解析
多基因敲除查基因家族冗余,或 CRISPRa / CRISPRi 做可逆调控。
疾病模型构建
在疾病相关细胞系里引入敲除,配合后续组学分析。
交付案例与发表文献
CASES & PUBLICATIONS
SCAP HL-7702 人正常肝细胞 · 慢病毒递送

研究 SCAP 在脂质代谢与自噬调控中的作用。交付单克隆敲除细胞株,附 STR 鉴定报告与 T 载体测序验证。

发表于 Autophagy,合作单位中国药科大学
NSUN2 BGC-823 人胃癌细胞 · 慢病毒递送

研究 RNA 甲基化修饰在肿瘤细胞中的功能。交付单克隆敲除细胞株与完整鉴定报告。

发表于 Cell Death & Disease,合作单位温州医科大学附属第二医院
AAV-SaCas9 肌肉组织 · 在体编辑

在肌肉组织完成在体基因编辑,属在体应用场景。

汉恒合作发表的基因编辑论文
腺病毒 小鼠肝脏 · 尾静脉给药

尾静脉注射感染小鼠肝脏并完成目的基因编辑,对纯化和内毒素要求更高。

合作单位华中农业大学
客户发表文献节选
期刊文章单位 / 备注
Nat NeurosciAnterior cingulate cortex dysfunction underlies social deficits in Shank3 mutant miceNature Neuroscience
Nat CommunSLE non-coding genetic risk variant determines the epigenetic dysfunction of an immune cell specific enhancerNature Communications
Mol TherPrevention of Muscle Wasting by CRISPR/Cas9-mediated Disruption of Myostatin In VivoMolecular Therapy
Cell Death DisNSUN2 modified by SUMO-2/3 promotes gastric cancer progression and regulates mRNA m5C methylation温州医科大学附属第二医院

期刊影响因子随年份变动,引用前请核对最新数据。案例引用须先取得客户授权。

常见问题
能保证一定敲除成功吗?
不能,也没有哪家能保证。编辑效率受靶位点、细胞类型和递送方式共同影响。能保证的是 sgRNA 经过设计与实验筛选、测序验证完整、交付物基因型明确。首轮效果不达预期会提供备选 sgRNA 方案。
一个基因要设计几条 sgRNA?
3 到 4 条并联测试。单条效率低是返工最常见的原因,多测几条比返工便宜。
需要多长时间?
质粒构建最快。病毒包装多出包装和滴度测定两个环节,腺病毒做在体还要算纯化和检测时间。具体周期请确认当前排期
有发表案例可以参考吗?
有,见 12 案例与文献
我自己设计 sgRNA,只委托构建载体可以吗?
可以。给序列就能进构建环节,我们仍会做一次序列可行性的形式检查。
质粒能用于原代细胞吗?
一般不推荐。原代细胞转染效率太低,很难拿到足够的编辑细胞,这类细胞建议用慢病毒或腺病毒(见 03 怎么选)。
整合进基因组有影响吗?
有影响,这也是选递送方式时最该权衡的一点。整合换来长期稳定表达,适合建稳转株;不希望改变基因组、希望表达随时间衰减,腺病毒更合适。
能做 sgRNA 文库筛选吗?
可以。文库对滴度和覆盖度的要求比单靶点高,方案阶段先明确规模和筛选压力。
腺病毒载体装得下 Cas9 吗?
装得下。腺病毒容量大,SpCas9 全长没有压力。真受容量限制的是 AAV,所以 AAV 方案一般用更小的 SaCas9。
腺病毒有细胞毒性吗?
高感染复数下可能出现,这是腺病毒项目的常见风险点。方案阶段会给出建议感染条件,必要时先做预实验定安全范围。
腺病毒能用于动物在体吗?
能,尾静脉等方式都可以。但在体对纯度和内毒素的要求比体外高,需求阶段要说清用途。要长期、组织特异性的在体编辑,AAV-saCas9 更合适。
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