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AAV-saCas9 在体基因编辑

服务概述

在体编辑就是把 CRISPR 系统直接送进活体动物的目标组织,让基因在原地被敲掉。相比做一株全身性敲除小鼠,周期短、成本低,还能做到特定组织、特定时点。

难点不在敲除本身,在递送。AAV 是现在在体递送的主力载体,免疫原性低、不整合、能长期表达,但它装不下 SpCas9。所以这一页的第一件事,是讲清楚为什么用 SaCas9。

关键点一
装得下
AAV 两个 ITR 之间上限约 4.5 kb,外源片段实际只有 2 kb 左右。SaCas9 比 SpCas9 小约 1 kb,能连 sgRNA 一起塞进单个载体。
关键点二
找得准
血清型决定病毒去哪个器官,启动子决定在哪种细胞里表达。两个都对上,才能真正做到组织特异性。
关键点三
等得起
AAV 介导的表达起效慢,取样时间点的设计直接决定能不能看到编辑效果。这一步最容易被低估。
为什么在体编辑要用 SaCas9 而不是 SpCas9

AAV 两个 ITR 之间的装载上限通常不超过 4.5 kb,去掉启动子、荧光标记、polyA 这些元件,留给外源片段的空间大约只有 2 kb。

SpCas9
约 4.1 kb,认 NGG 的 PAM。加上 sgRNA 和调控元件,装进 AAV 基本超载。
SaCas9
比 SpCas9 短约 1 kb,认更长的 NNGRRT。能连 sgRNA 一起做成单载体。
AAV 装载上限
两个 ITR 之间约 4.5 kb,留给外源片段的空间大约只有 2 kb。
一个载体装得下,这是关键差别

SaCas9 来自金黄色葡萄球菌,序列明显比 SpCas9 短。它和 sgRNA、启动子一起装进单个 AAV 载体(All-in-one),一次注射就能把整套系统递进去。SpCas9 走这条路基本装不下,只能拆成双载体,两个病毒挤同一个细胞的概率就低了,效率跟着掉。

PAM 序列不同,靶点选择不一样

SpCas9 认 NGG,SaCas9 认更长的 NNGRRT。SaCas9 能设计的靶点位置更少,但反过来,SpCas9 靶点受限的位点,SaCas9 常常能给出新方案。sgRNA 设计阶段我们会按 SaCas9 的 PAM 特征重做,不会沿用 SpCas9 的设计。

SaCas9 用于 AAV 递送的方案源自 2015 年张峰团队发表在 Nature 的工作(Nature 2015, 520:186-191)。AAV 的包装容量与血清型完整数据见 腺相关病毒(AAV)包装

血清型怎么选

AAV 各血清型的衣壳蛋白不同,对不同组织和细胞的亲和性差异很大。选血清型是在体实验的第一步,也是影响效果最大的一步。下面这张表按感染部位整理了常用血清型和给药方式。

感染部位推荐血清型常用注射方式
心脏AAV9原位多点注射 / 尾静脉注射
肝脏AAV8 / AAV9尾静脉注射 / 肝门静脉注射 / 眼眶静脉注射
全脑(跨血脑屏障)AAV-BBB / AAV-cap-B10尾静脉注射
大脑(局部)AAV9 / AAV2 / AAV5 / AAV8立体定位注射
脊髓AAV9 / AAV1 / AAV5鞘内注射
骨骼肌AAV9原位多点注射
眼睛AAV2 / AAV-DJ玻璃体腔注射 / 视网膜下腔注射
视网膜AAV-anc80L / AAV-GL / AAV-NN / AAV-shH10视网膜下腔注射
肺脏AAV5 / AAV6 / AAV-6.2FF气管内注射 / 气管插管注射 / 滴鼻 / 雾化
肾脏AAV2 / AAV9 / AAV-GEC肾实质注射 / 肾盂注射 / 尾静脉注射
胰腺AAV8 / AAV9 / AAV-PAN导管注射 / 腹腔注射 / 尾静脉注射
脂肪AAV9腹腔注射(腹内脂肪)/ 原位注射(皮下脂肪)
肠道AAV9 / AAV1 / AAV5 / AAV8 / AAV2肠系膜注射 / 灌肠 / 腹腔注射
血管(内皮为主)AAV9 / AAV1 / AAV5 / AAV-VEC / AAV-eVEC / AAV-VEC2腹主动脉局部孵育 / 尾静脉注射
内耳AAV-ie / AAV-anc80L圆窗膜注射 / 后半规管注射
皮肤AAV9皮内注射 / 皮下注射 / 滚针 / 涂抹
膀胱AAV-BLS膀胱内注射 / 逼尿肌注射
关节软骨 / 骨组织AAV-DSS-NTER / AAV9关节腔注射 / 骨髓腔注射 / 尾静脉注射
T 细胞AAV-Ark313静脉注射

上表为在体编辑视角的精简版,完整血清型列表、特异性血清型与注射方式见 特异性腺相关病毒。方案阶段请与我们确认当前可提供的血清型。

血清型不等于特异性

血清型决定的是病毒更容易进入哪些细胞,属于物理层面的递送效率。真正把表达限定在特定细胞类型,要靠组织特异性启动子,或者 Cre 依赖的表达系统。这两层是独立的,可以叠加。

同一个血清型,换条给药途径,分布结果可能完全不同。文献里的亲和性数据跟剂量、动物周龄、品系、给药方式都有关,落到自己的实验上建议先用报告载体做小量预筛。

启动子怎么选

启动子决定基因进入细胞后在哪些细胞里表达。用组织特异性启动子,可以把表达限定在特定细胞类型内,避免在非目标细胞里产生编辑。研究某个基因在特定细胞里的功能时,这一步是必须的。

组织常用特异性启动子
神经hSyn、mecp2、TUBA1A、CaMKII、hVGAT、TH、gfaABC1D(星形胶质细胞)、iba1 / CX3CR1 / TMEM119(小胶质细胞)、CNP / MBP / PLP(少突胶质细胞)
心脏cTNT(心肌细胞)、POSTN / COL1A2 / TCF21(心肌成纤维细胞)、ANF(心房)
肌肉MHCK7、ACTA1(Spc5-12)、MYOG、SM22a(平滑肌)、TCF4
肝脏TBG、ALB、Apoe、Hlp(人源肝脏)、LRAT(肝星状细胞)、OIT3(肝窦内皮)
SP-C(SFTPC)
肾脏nphs1 / nphs2(足细胞)、Ksp-cadherin、SGLT2、Ggt1
胰腺 / 肠道PDX1、Insulin2、Villin
脂肪FABP4(aP2)、adiponectin、UCP1(棕色脂肪)、Myf5
内皮 / 免疫TIE1、TIE2、CDH5、ICAM2、F4/80(巨噬细胞)、lyve1 / PROX1(淋巴内皮)
视网膜 / 其他rpe65、Arr3、RLBP1、Keratin14(皮肤)、COL2A1(软骨)、TERT(肿瘤)

完整启动子库与选择建议见 特异性腺相关病毒。需要某一组织但表里没有,方案阶段可以单独评估。

在体能实现哪些编辑类型
在体基因敲除

在目标组织里敲除特定基因,研究基因在整体动物水平的功能。相比全身性敲除动物模型,周期更短、成本更低,还能实现特定组织与特定时点的敲除。目前开放的是敲除类编辑。

条件性敲除

结合 Cre 依赖的表达系统,在特定组织或特定时间点触发编辑。适合研究发育必需基因,或者要规避胚胎致死的情况。项目开始前需明确 Cre 来源与诱导方式。

多基因编辑

同一载体上串多条 sgRNA,或者分装到多个载体。受 AAV 容量限制,数量需要方案阶段评估。

基因敲入(KI)与点突变类项目暂未开放,有相关需求可留言登记。体外细胞的编辑方案看 体外细胞水平 CRISPR/Cas9 基因编辑

给药途径与表达窗口

给药途径和血清型是绑在一起选的。尾静脉、局部注射、脑立体定位、鞘内、玻璃体腔、滴鼻雾化,不同途径对应的组织分布差别很大,选错了后面怎么调都补不回来。

常见给药途径

尾静脉注射,全身性递送,肝脏、心脏、肌肉分布好,操作最简单。

立体定位注射,绕开血脑屏障做局部脑区,需要手术操作。

鞘内注射,主要用于脊髓与背根神经节。

局部多点注射,心肌、骨骼肌原位注射,用量小、局部浓度高。

视网膜下腔 / 玻璃体腔注射,眼科相关研究。

气管内 / 滴鼻 / 雾化,肺脏递送。

表达窗口是最容易踩的坑

AAV 介导的表达起效慢,标准单链 AAV 进入细胞后还要做第二条链合成,到峰值表达通常要一到三周。取样太早,什么都看不到;这一点在设计时间线时最容易被低估,也是项目返工的高发区。具体时长与血清型、启动子、给药剂量相关,会在方案里明确。

服务流程
STEP 1
目标组织与方案确定
选血清型与启动子
STEP 2
sgRNA 设计与载体构建
按 SaCas9 PAM
STEP 3
AAV 包装与滴度测定
在体要求更高
STEP 4
给药与表达窗口
周期待确认
STEP 5
编辑效果验证与交付
靶组织 + 非靶组织
1. 目标组织与方案确定

先明确目标组织、给药途径、动物品系与周龄,据此定血清型与启动子组合。这一步定错了,后面全白做。

2. sgRNA 设计与载体构建

按 SaCas9 的 PAM 特征重新设计 sgRNA,构建 All-in-one 或双载体方案,完成后测序验证。

3. AAV 包装与滴度测定

完成包装与纯化并测定滴度。在体实验对病毒纯度和滴度的要求高于体外。

4. 给药与表达窗口

按方案给药,并预留足够的表达时间再取样。取样时间点的设计直接决定能不能观察到编辑效果。

5. 编辑效果验证与交付

取靶组织做 T 载体测序、WB、qPCR 或免疫荧光验证,非靶组织同步检测以评估特异性。交付病毒液、质控报告与验证结果。

交付标准与质控
项目检测方式说明
纯化 AAV 病毒液按约定体积与滴度交付纯度满足在体使用要求
滴度测定报告测定方法与范围待回填明确测定方法与结果
载体测序报告Sanger 测序确认 SaCas9 与 sgRNA 序列正确
无菌检测常规质控在体实验必检
内毒素检测LAL 法,限值待回填在体实验必检
编辑效果验证(可选)T 载体测序 / WB / qPCR靶组织与非靶组织同步检测

在体实验的质控要求高于体外,无菌与内毒素是必检项,不做就等于把动物的状态押上去。

服务价格与报价构成

在体项目的成本结构跟体外不一样,主要差在血清型选择、给药途径和动物实验规模上。确认需求后给书面报价,不做统一标价。

影响报价的几个变量

血清型与载体方案,天然血清型、特异性血清型、All-in-one 还是双载体。

滴度与交付量,在体实验对病毒总量要求通常高于体外。

是否包含动物给药与组织取样,涉及动物实验操作环节的,成本另计。

非靶组织特异性检测的组数,验证越充分,成本相应增加。

周期要求,常规排期与加急排期的资源占用不同。

把靶基因、物种、目标组织、给药方式四项发过来,就能拿到含方案、周期和费用的书面报价。

为什么选择汉恒
血清型与启动子库齐备
从 AAV9、AAV8 这类天然血清型,到 AAV-BBB、AAV-cap-B10、AAV-PHP.S、AAV-shH10、AAV-ie 等特异性血清型,配套上百种组织特异性启动子。
靶组织与非靶组织同步验证
不只测打进去的地方,也测不该被打到的地方。特异性到底怎么样,用数据说话。
在体级别的纯化与质控
无菌和支原体检测之外,内毒素控制在体项目必检,纯度按在体标准执行。
在体编辑有发表记录
客户成果见于 Nature Neuroscience、Nature Communications、Molecular Therapy 等期刊。
典型应用场景
神经科学
特定脑区或细胞类型敲除,配合 hSyn、CaMKII、GFAP 等启动子。
代谢与肝脏
肝脏靶向敲除,研究脂质代谢、糖代谢相关基因。
肌肉与心脏
心肌或骨骼肌原位递送,研究肌病与心功能相关基因。
发育必需基因
条件性敲除绕过胚胎致死,研究发育阶段功能。
交付案例
AAV-SaCas9 肌肉组织 · 在体编辑

在肌肉组织完成在体基因编辑,属于典型的在体敲除应用。

汉恒合作发表的基因编辑论文
腺病毒对照 小鼠肝脏 · 尾静脉给药

同为在体递送,腺病毒走尾静脉感染小鼠肝脏完成编辑。选择 AAV 还是腺病毒,取决于要不要长期表达。

合作单位华中农业大学
常见问题
AAV 表达多久起效?
标准单链 AAV 进入细胞后还要合成第二条链,到峰值表达通常要一到三周。具体时长与血清型、启动子、给药剂量相关,会在方案里明确。取样太早看不到效果,这是项目返工最常见的原因。
能只在肝脏(或肌肉、神经)里敲除吗?
能,这正是血清型加组织特异性启动子的作用。把目标组织和细胞类型告诉我们,会给出推荐的组合方案。完整列表见 特异性腺相关病毒
SpCas9 能不能装进 AAV?
压力很大。SpCas9 约 4.1 kb,加上 sgRNA 和调控元件,很容易超出 AAV 约 4.5 kb 的装载上限。实践中一般用更小的 SaCas9,或者拆成双载体方案。
做在体敲除和买一株敲除小鼠,哪个更合适?
看实验目的。在体敲除周期短、成本低,能做特定组织和特定时点;敲除小鼠适合需要稳定遗传品系或全身性敲除的研究。两者不冲突,也可以组合使用。
免疫反应会影响结果吗?
AAV 的免疫原性低于腺病毒,但在体实验仍要考虑免疫因素对表达的影响。方案阶段会就动物品系、剂量和给药途径给出建议。
给药剂量怎么定?
剂量与血清型、启动子、动物品系、周龄和实验目的都有关,文献数值不宜直接套用。推荐剂量区间待实验部补充,正式实验前建议先用报告载体做小量预筛。
能做条件性敲除吗?
可以,用 Cre 依赖的表达系统。项目开始前需明确 Cre 来源和诱导方式。
客户发表文献节选
Laterodorsal tegmentum interneuron subtypes oppositely regulate olfactory cue-induced innate fear
(杂志: Nature Neuroscience,段树民团队)
LRP6 acts as a scaffold protein in cardiac gap junction assembly
(杂志: Nature Communications,陈义汉团队)
Prevention of Muscle Wasting by CRISPR/Cas9-mediated Disruption of Myostatin In Vivo
(杂志: Molecular Therapy)
Anterior cingulate cortex dysfunction underlies social deficits in Shank3 mutant mice
(杂志: Nature Neuroscience)
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